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總膳食纖維檢測試劑盒
產(chǎn)品編號:ZZK-K-TDFR,規(guī)格:200次檢測
1. 簡介:
膳食纖維是指碳水化合物及其相類似物質(zhì)的總和,包括多糖、寡糖、木質(zhì)素以及相關(guān)的植物物質(zhì)。主要有纖維素、半纖維素、果膠及親水膠體物質(zhì),如樹膠、海藻多糖等組分;另外還包括植物細胞壁中所含有的木質(zhì)素;不被人體消HUA酶所分解的物質(zhì),如抗性淀粉、抗性糊精、抗性低聚糖、改性纖維素、黏質(zhì)、寡糖以及少量相關(guān)成分,如蠟紙、角質(zhì)、軟木脂等。
總膳食纖維檢測試劑盒是根據(jù)AOAC991.43,AOAC 985.29,AACC32-07和AACC 32-05方法開發(fā)的,也適用于其它方法,如AACC Method 32-21,AACC method32-06。
2. 檢測原理
脫脂(如大于10%)干燥后的樣品經(jīng)熱穩(wěn)定a-淀FEN酶、蛋白酶和淀粉葡萄糖苷酶酶解消化,酶解液通過乙醇沉淀、過濾,乙醇和丙酮洗滌殘渣后干燥、稱重,得到總膳食纖維(TDF)殘渣;
酶解液通過直接過濾、熱水洗滌殘渣,干燥后稱重,得到不溶性膳食纖維(IDF)殘渣;
濾液用乙醇沉淀,過濾、干燥、稱重,得到可溶性膳食纖維(SDF)殘渣。
TDF、IDF和SDF的殘渣扣除蛋白質(zhì)、灰分和空白即得TDF、IDF和SDF含量。
該檢測試劑盒的主要優(yōu)勢在于直接提供高純度的酶,酶的活力是標準化的,而標準化的a-淀FEN酶的活力在測量抗性淀粉是公認的。楊樹彥 13788987962 QQ:1961275959淀粉葡萄糖苷酶中基本沒有纖維素酶,而其他常用的酶制劑中常含有這種污染物,這將導致溶解和低估β-葡聚糖。楊樹彥 13788987962 QQ:1961275959該試劑盒提供的酶都是穩(wěn)定的液體,可以保存到試劑盒有效期,并且是直接應(yīng)用液,不需要使用前再溶解。
3. 用途
適用于檢測谷物、水果、蔬菜和加工食品中的總膳食纖維(TDF)、不溶性
膳食纖維(IDF)和可溶性膳食纖維(SDF)的檢測。
4. 提供試劑及材料
每一個盒中的提供的酶試劑足夠進行200個試驗,如另外需要可單獨訂貨:
Bottle 1 ,1瓶:
熱穩(wěn)定a-淀FEN酶(20mL,~ 3,000 U/mL,Ceralpha method;~ 10,000 U/mL on
soluble starch。).
Bottle 2,1瓶:
純化的蛋白酶(20mL,50 mg/mL; ~ 350 tyrosine Units/mL。)
Bottle 3,2瓶:
淀粉葡萄糖苷酶(20mL,3300 U/mL on soluble starch。)
總計:80ml(4瓶20ml包裝)
另外,實驗中需要用到硅藻土:
酸洗硅藻土Celite?545, 100g或500g包裝,(貨號:G-CEL100,G-CEL500)
其他相關(guān)試劑盒:
膳食纖維質(zhì)控試劑盒(貨號:K-TSCK)
質(zhì)控試劑盒用于檢驗酶的效力和純度,含下表中所列物質(zhì)每種一瓶,并附有技術(shù)數(shù)據(jù)單(K-TSCK),盒中每種物質(zhì)足夠10次測試用。
|
品種 |
數(shù)量 |
|
β-葡聚糖(大麥) |
1.0g |
|
高直鏈玉米淀粉 |
10.0g |
|
淀粉(小麥) |
10.0g |
|
酪蛋白 |
5.0g |
|
果膠 |
1.0g |
5. 需要的設(shè)備和試劑
5.1 設(shè)備
A. 高型無導流口燒杯:400mL或600mL
B. 坩堝:具粗面燒結(jié)玻璃板,孔徑40-60 μm。清洗后在馬福爐中525℃灰化6小時或過夜,用真空泵除去硅藻土和灰分,室溫下用2%清洗液浸泡1小時,用水和蒸餾水沖洗干凈,用15 mL丙酮沖洗后風干,加1g硅藻土到干燥的坩堝中,在130℃干燥至恒重,在干燥器中冷卻1小時,記下坩堝(包括硅藻土)的重量。
C. 真空溶劑過濾裝置:真空泵或有調(diào)節(jié)裝置的抽吸器,1L的抽濾瓶,側(cè)壁有抽濾口,以及抽濾瓶配套的橡膠塞。用于酶解液的抽濾。
D. 恒溫振蕩水?。?5-100℃
E. 分析天平:感量0.1mg
F. 天平(臺秤):4 000g量程,感量0.1g
G. 馬福爐:525±5°C,
H. 烘箱:103±2℃,130±3℃
I. 真空干燥箱
J. 干燥器:二氧化硅或等同干燥劑
K. PH計,具有溫度補償功能。
L. 微量凱氏定氮儀。
M. 移液器,50-200 μL,5 mL,一次性移液吸頭。
N. 計時器。
O. 橡膠刮勺
P. 磁力攪拌器
5.2 試劑
A. 95%乙醇(體積比),
B. 78 %乙醇:取821mL95%乙醇置于容量瓶中,用水稀釋到刻度,混勻。
C. 丙酮
D. 蒸餾水或去離子水
E. 清洗液Micro (International Products Corp.,Trenton,NJ).,配成2%液體
F. MES/TRIS緩沖液(0.05mol/L):稱取19.52g (MES) (Sigma, M 8250)和14.2 g
(TRIS) (Sigma,T1503),用1.7L蒸餾水溶解,用6mol/L氫氧化鈉調(diào)節(jié)PH至
8.2±0.1,加水稀釋到2L(注意24℃時PH值為8.2,20℃時PH值為8.3,27-28℃
時PH值為8.1)
G. 鹽酸溶液(0.561 mol/L):取93.5mL 6 mol/L的鹽酸,加入700mL水中,混勻
后用水定容到1L。
H. 氫氧化鈉
I. PH值標準緩沖液:PH值為 4.0,7.0 和10.0。
6. 酶的純化和標準化
6.1 根據(jù)AACC/AOAC的膳食纖維檢測方法,必須確保酶的純度。
6.1.1 淀粉葡萄糖苷酶被木聚糖酶、纖維素酶和果膠酶污染,會低估β-葡聚糖、
阿拉伯木聚糖和果膠的含量。
6.1.2 熱穩(wěn)定a-淀FEN酶被污染,會影響抗性淀粉的測量。
6.1.3 蛋白酶被4-β-葡聚糖酶污染,會低估β-葡聚糖的含量。
6.1.4 如不是使用該的酶,請參考下面方法測定。
|
Test Sample |
Activity Tested |
Sample Wt(g) |
Expected Recovery (%) |
|
Citrus pectin |
Pectinasea 『1』 |
0.1 |
90-95 『3』 |
|
?-Glucan (barley) |
?-glucanase (cellulase)『1』 |
0.1 |
95-100 |
|
Wheat starch |
Amylase 『2』 |
1.0 |
0-1 |
|
Casein |
Protease 『2』 |
0.3 |
0-2 |
|
High amylose starch |
Amylase |
1.0 |
~30 『4』 |
注解:
『1』:沒有酶活力作用。
『2』:最大酶活力作用
『3』:除很少量的柑橘果膠全部沉淀
『4』:含有大量抗性淀粉,準確回收率的數(shù)值影響熱穩(wěn)定a-淀FEN酶的使用量。
6.2 根據(jù)AACC/AOAC的膳食纖維檢測方法,必須對酶標準化測定,如果不是使用該的酶,請按以下方法測定
6.2.1 淀粉葡萄糖苷酶,0.2 mL,
--- 酶活力表示方法1:淀粉/葡萄糖酶-過氧化物酶法,3300 U/mL,1個酶活力單位定義為:40°C,PH值4.5時,每分鐘釋放1 μmol葡萄糖所需要的酶量。
--- 酶活力表示方法2:對-硝基苯基-b-麥芽糖苷(PNPBM)法,200 U/mL, 1個酶活力單位(1PNP單位))定義為:40°C,有過量萄糖苷酶存在下,每分鐘從對硝基苯基-β-麥芽糖苷釋放1 μmol 對硝基苯基所需要的酶量。
6.2.2 熱穩(wěn)定a-淀FEN酶,0.05 mL,
--- 酶活力表示方法1:以淀粉為底物,以Nelson/Somogyi還原糖表示,10000U/mL ,1個酶活力單位定義為:40°C,PH值6.5時,每分鐘釋放1 μmol葡萄糖所需要的酶量。
--- 酶活力表示方法2:對硝基苯基麥芽糖為底物,3,000 U/mL(Ceralpha),1個酶活力單位定義為:40°C,PH值6.5時,每分鐘釋放1 μmol對-硝基苯基所需要的酶量。
6.2.3 蛋白酶,0.10 mL
--- 酶活力表示方法1:酪蛋白測試,350 U/mL或50 mg/mL或7 Tyrosine U/mL,1個酶活力單位定義為:40°C,PH值8.0時,每分鐘從可溶性酪蛋白中水解出(并溶于三氯YI酸)1 μmol酪氨酸所需要的酶量。
--- 酶活力表示方法2:偶氮酪蛋白測試,350 U/mL或50 mg/mL或7 Tyrosine U/mL,1個內(nèi)肽酶活力單位定義為:40°C,PH值8.0時,每分鐘從可溶性酪蛋白中水解出(并溶于三氯YI酸)1μmol酪氨酸所需要的酶量。該偶氮酪蛋白(貨號:S-AZCAS).
7. 檢測步驟
7.1 試樣制備
準確稱取雙份試樣各1 g,質(zhì)量差小于0.005g,精確到0.1mg,置于400mL或600mL高型燒杯中,同時制備雙份空白樣,在每個燒杯中加入40 mL PH值8.2的MES-TRIS緩沖液,磁力攪拌,直到試樣完全分散到緩沖液中。
7.2 熱穩(wěn)定a-淀FEN酶酶解:加入50 μL熱穩(wěn)定a-淀FEN酶溶液,加蓋鋁箔,置于95-100°C恒溫振蕩水浴中持續(xù)振搖,當所有燒杯全部放入水浴開始計時,反應(yīng)35分鐘。
7.3 冷卻:將燒杯取出玲卻到60°C,除去鋁箔蓋,用刮勺將燒杯內(nèi)壁和底部的膠狀物刮下,用10 mL蒸餾水沖洗燒杯壁和刮勺。
7.4 蛋白酶酶解:在每個燒杯中各加入100 μL蛋白酶溶液,加蓋鋁箔,置于60°C恒振蕩水浴中,當燒杯內(nèi)溫度達到60°C開始計時,持續(xù)反應(yīng)30分鐘。
7.5 PH值調(diào)節(jié):反應(yīng)30分鐘后,邊攪拌邊加入0.561 mol/L鹽酸,嚴格控制60°C,用 1mol/L氫氧化鈉溶液或1mol/L鹽酸溶液,控制PH值在4.5±0.2。
7.6 淀粉葡萄糖苷酶酶解:在上述溶液中邊攪拌邊加入200 μL淀粉葡萄糖苷酶溶液,加蓋鋁箔,置于60°C恒溫振蕩水浴中,持續(xù)振搖,當燒杯內(nèi)溫度達到60°C開始計時,反應(yīng)30分鐘。
8. 測定
8.1 不溶性膳食纖維測定:
8.1.1 過濾洗滌:試樣酶解液全部轉(zhuǎn)移到坩堝中過濾,殘渣用10mL預(yù)熱到70°C的蒸餾水洗滌兩次,合并過濾液,轉(zhuǎn)移至另一600mL高腳燒杯中,備測可溶性膳食纖維。殘渣分別用10mL 95%乙醇和丙酮洗滌兩次,抽濾去除洗滌液,將坩堝連同殘渣在103°C烘干過夜,將坩堝置于干燥器中冷卻1小時,稱重(包括坩堝、膳食纖維殘渣和硅藻土),精確至0.1mg,減去坩堝和硅藻土的干重,計算殘渣質(zhì)量。
8.1.2 蛋白質(zhì)和灰分測定:稱完質(zhì)量的殘渣和硅藻土的混合物,一份用凱氏定氮法,以N×6.25為換算系數(shù),計算蛋白質(zhì)質(zhì)量。另一份在525°C灰化5小時,于干燥器中冷卻,精確稱量坩堝總量(精確至0.1mg)減去坩堝和硅藻土干重,計算灰分質(zhì)量。
8.2 可溶性膳食纖維測定
8.2.1 計算濾液體積:將不可溶性膳食纖維過濾后的濾液收集到600mL的高型燒杯中,通過燒杯+濾液總重扣除燒杯質(zhì)量的方法估算濾液的體積。
8.2.2 沉淀:將濾液加入4倍體積預(yù)熱60°C的95%乙醇,或取80g濾液加入320mL預(yù)熱60°C的95%乙醇室溫下沉淀1小時。
8.2.3 過濾:在干燥的坩堝中加入1g硅藻土,70°C真空干燥至恒重,記錄坩堝的質(zhì)量(精確到0.1mg)。用15mL 78%乙醇將硅藻土潤濕,并用真空溶劑過濾裝置在抽真空條件下,使硅藻土平鋪于坩堝中。將樣品酶解液緩慢轉(zhuǎn)移至對應(yīng)的坩堝中,抽濾。用刮勺和78%乙醇將所有殘渣轉(zhuǎn)至坩堝中。
8.2.4 洗滌:分別用15mL 78%乙醇、15mL 95%乙醇和15mL丙酮洗滌殘渣各兩次,抽濾去除洗滌液后,將坩堝連同殘渣在105°C烘干過夜。將坩堝置于干燥器中冷卻1小時,稱重(包括坩堝、膳食纖維殘渣和硅藻土),精確至0.1mg。減去坩堝和硅藻土的干重,計算殘渣質(zhì)量。
8.2.5 蛋白質(zhì)和灰分測定:稱完質(zhì)量的殘渣和硅藻土的混合物,一份用凱氏定氮法,以N×6.25為換算系數(shù),計算蛋白質(zhì)質(zhì)量,另一份在525°C灰化5小時,于干燥器中冷卻,精確稱量坩堝總量(精確至0.1mg)減去坩堝和硅藻土干重,計算灰分質(zhì)量。
8.3 總膳食纖維檢測檢測
8.3.1 沉淀:在每份試樣中加入預(yù)熱至60°C的95%乙醇225mL(預(yù)熱后的體積,如乙醇的溫度超過65°C,則加入228mL),乙醇與樣液體積比為4:1,取出燒杯,蓋上鋁箔,室溫下沉淀1小時。建議改為:稱量酶解液的質(zhì)量,用天平加入4倍質(zhì)量的預(yù)熱的60°C的95%乙醇,4°C冰箱中沉淀過夜。
8.3.2 過濾:在干燥的坩堝中加入1g硅藻土,70°C真空干燥至恒重,記錄坩堝的質(zhì)量(精確到0.1mg)。用15mL 78%乙醇將硅藻土潤濕,并用真空溶劑過濾裝置在抽真空條件下,使硅藻土平鋪于坩堝中。將樣品酶解液緩慢轉(zhuǎn)移至對應(yīng)的坩堝中,抽濾。用刮勺和78%乙醇將所有殘渣轉(zhuǎn)至坩堝中。
8.3.3 洗滌:分別用15mL 78%乙醇、15mL 95%乙醇和15mL丙酮洗滌殘渣各兩次,抽濾去除洗滌液后,將坩堝連同殘渣在105°C烘干過夜。將坩堝置于干燥器中冷卻1小時,稱重(包括坩堝、膳食纖維殘渣和硅藻土),精確至0.1mg。減去坩堝和硅藻土的干重,計算殘渣質(zhì)量。
8.3.4 蛋白質(zhì)和灰分測定:稱完質(zhì)量的殘渣和硅藻土的混合物,一份用凱氏定氮
法,以N×6.25為換算系數(shù),計算蛋白質(zhì)質(zhì)量。,另一份在525°C灰化5小時,
于干燥器中冷卻,精確稱量坩堝總量(精確至0.1mg)減去坩堝和硅藻土
干重,計算灰分質(zhì)量。
9. 計算:
DF(%)=『(R1+R2)/2-p-A-B』/『(M1+M2)/2』*100%
式中:
DF=樣品中膳食纖維含量(TDF、IDF、SDF),%
R1 和R2=雙份樣品殘渣的質(zhì)量,單位為毫克(mg)
m1 和m2=雙份樣品的質(zhì)量,單位為毫克(mg)
A=灰分的質(zhì)量,
P=蛋白的質(zhì)量
B=空白=(BR1+BR2)/2-BP-BA
BR1 和BR2=雙份試樣空白殘渣的質(zhì)量
BP=試樣空白蛋白的質(zhì)量
BA=試樣空白灰分的質(zhì)量
可以使用該的計算軟件Mega-CalcTM進行自動計算。
方法二
根據(jù)AACC method 32-05 和AOAC Method 985.29方法測定
1. 儀器設(shè)備和同方法一
2. 試劑和溶液
a. 280±2.0 mL 95 %乙醇
b.10±0.5 mL 78 %乙醇
c. 50±0.5 mL緩沖液
d. 磷酸鹽緩沖液(0.08mol/L,PH值6.0): 取1.400g Na2HPO4和9.68g NaH2PO4
溶解在700mL蒸餾水中,用水定容到1L,用PH計檢查PH值。
e. 氫氧化鈉溶液(0.275mol/L):去11g氫氧化鈉溶解在700mL蒸餾水中,冷卻轉(zhuǎn)
移到容量瓶中,用水定容到1L。
f. 鹽酸溶液(0.325 mol/L):取 325 mL 1.0 mol/L 鹽酸置于容量瓶中,用水定容
到1L。
3. 樣品準備
總膳食纖維的測定必須是低脂或無脂的干燥樣品,取混勻后的樣品于70°C真
空干燥過夜,干燥器中冷卻,再稱重記錄重量損失,干樣粉碎后過0.3-0.5 mm
篩,若試樣不能加熱,則冷凍干燥后再粉碎過篩。如果是高脂肪樣品(> 10 %),
取經(jīng)過干燥的樣品分別用25mL石油醚脫脂三次,干燥后記錄脫脂的質(zhì)量損失,
最后計算總膳食纖維含量時進行進行校正,粉碎過篩后的干燥試樣放在干燥
器中待用。
4. 分析步驟
準確稱取雙份試樣各1 g,質(zhì)量差小于0.005g,精確到0.1mg,置于400mL或
600mL高型燒杯中,同時制備雙份空白樣,在每個燒杯中加入50 mL PH值6.0
的磷酸鹽緩沖液,磁力攪拌,直到試樣完全分散到緩沖液中,控制PH值6.0±0.1。
4.2 熱穩(wěn)定a-淀FEN酶酶解:加入50 μL熱穩(wěn)定a-淀FEN酶溶液,加蓋鋁箔,置于沸騰
水浴中15分鐘,每5分鐘輕輕振蕩一次。當燒杯內(nèi)的溫度到100°C開始計時,
總共大約30分鐘。
4.3 冷卻:將燒杯取出冷卻到室溫,加入10 mL 0.275mol/L 的氫氧化鈉,調(diào)節(jié)
PH值在7.5±0.1。
4.4 蛋白酶酶解:在每個燒杯中各加入100 μL蛋白酶溶液,加蓋鋁箔,置于60°C
恒振蕩水浴中,當燒杯溫度達到60°C開始計時,持續(xù)反應(yīng)30分鐘。
4.5 冷卻:加入10 mL 0.325 mol/L鹽酸,調(diào)節(jié)PH值在4.5±0.2。
4.6 淀粉葡萄糖苷酶酶解:在上述溶液中邊攪拌邊加入200 μL淀粉葡萄糖苷酶溶
液,加蓋鋁箔,置于60°C恒溫振蕩水浴中,持續(xù)振搖,當燒杯內(nèi)溫度達到60°C
開始計時,反應(yīng)20分鐘。
4.7 在每份試樣中加入預(yù)熱至60°C的95%乙醇280mL(預(yù)熱前的體積),乙醇與樣
液體積比為4:1,取出燒杯,蓋上鋁箔,室溫下沉淀1小時。
4.8 過濾:在干燥的坩堝中加入1g硅藻土,70°C真空干燥至恒重,記錄坩堝的質(zhì)
量(精確到0.1mg)。用15mL 78%乙醇將硅藻土潤濕,并用真空溶劑過濾裝置
在抽真空條件下,使硅藻土平鋪于坩堝中。將樣品酶解液緩慢轉(zhuǎn)移至對應(yīng)的
坩堝中,抽濾。用刮勺和78%乙醇將所有殘渣轉(zhuǎn)至坩堝中。
4.9 洗滌:分別用20mL 78%乙醇洗滌3次、10mL 95%乙醇和10mL丙酮洗滌殘渣
各兩次,抽濾去除洗滌液后,將坩堝連同殘渣在105°C烘干過夜或70°C真空
干燥過夜。將坩堝置于干燥器中冷卻1小時,稱重(包括坩堝、膳食纖維殘渣
和硅藻土),精確至0.1mg。減去坩堝和硅藻土的干重,計算殘渣質(zhì)量。
4.10 蛋白質(zhì)和灰分測定:稱完質(zhì)量的殘渣和硅藻土的混合物,一份用凱氏定
氮法,以N×6.25為換算系數(shù),計算蛋白質(zhì)含量。另一份在525°C灰化5小時,
于干燥器中冷卻,精確稱量坩堝總量(精確至0.1mg)減去坩堝和硅藻土干重,
計算灰分質(zhì)量。
計算:
未校正的平均空白殘渣 (UABR)=平均試樣空白殘渣質(zhì)量,單位為毫克
未校正空白蛋白殘渣(BPR)=UABR x %空白蛋白/100
未校正空白灰分殘渣(BAR)=UABR x %空白灰分/100
校正的空白(CB)= UABR - BPR - BAR
未校正的平均樣品殘渣 (USAR)=平均試樣空白殘渣質(zhì)量,單位為毫克
未校正樣品蛋白殘渣(SPR)=UABR x %空白蛋白/100
未校正樣品灰分殘渣(SAR)=UABR x %空白灰分/100
校正的樣品(CSR)= USAR-SPR-SAR-CB% TDF= 100 x CSR/樣品質(zhì)量mg最終的% TDF是去除了和水分后的總膳食纖維含量。
10、參考文獻:
1. Association of Official Analytical Chemists (1985). Official Methods of Analysis, 14th ed., 1st suppl. Secs. 43, A14-43,A20, p.399.
2. Association of Official Analytical Chemists (1986). Changes in methods. J. Assoc. Off. Anal. Chem., 69:370.
3. Association of Official Analytical Chemists (1987). Changes in methods. J. Assoc. Off. Anal. Chem., 70:393.
4. Prosky, L., Asp, N.-G., Furda, I., DeVries, J.W., Schweizer, T.F.and Harland, B.F. (1985).Determination of total dietary fibre in foods and food products: Collaborative study. J. Assoc. Off. Anal.Chem., 68:677.
5. Prosky, L., Asp, N.-G., Schweizer, T.F., DeVries, J.W. and Furda,I. (1988). Determination of insoluble, soluble, and total dietary fibre in
foods and food products. J. Assoc. Off. Anal. Chem., 71:1017.16
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